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JC-1 MitoMP Detection Kit
化学名
CAS番号 -
製品コード MT09

 容 量
    税込価格
本体価格
1
set
\24,840
 
\23,000
【キット内容】 
・JC-1 Dye          100 nmol ×1
・Imaging Buffer (10x)       6 ml ×1

測定条件誤記のお知らせ (2018年12月17日)
本製品を用いたプレートリーダーによる検出波長の表記でパンフレット及び製品ホームページの記載に誤記がございました。
詳しくはコチラ(PDFリンク)をご覧ください。
 
 
 


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取扱説明書

 性 質
JC-1 MitoMP Detection Kitは、ミトコンドリア膜電位を測定できるキットです。従来、JC-1は染色溶液調製の際、溶けづらい等の課題がありますが、本キットは溶液調製方法によりそれを克服しております。さらに、本キットに含まれるImaging Bufferを用いることにより、蛍光バックグラウンドを抑えながら細胞にダメージを与えにくい状態で、細胞を観察することができます。
本キットは、従来よりミトコンドリア膜電位検出に使用されているJC-1色素と解析用のバッファーが含まれています。初めての方も使い易いよう、難溶性色素の溶解プロトコルをはじめ、様々なアプリケーションをご用意しています。
なぜミトコンドリア膜電位が見られているか
ミトコンドリアは、ATP 等のエネルギー産生の場であり、その活性の変化や機能障害ががんや老化、神経変性疾患などと密接に関連しています。そのためミトコンドリアの状態を理解することが重要であり、その指標としてエネルギー産生に伴い生じる膜電位差が評価されています。
ミトコンドリアが正常で膜電位差が保たれた状態では、JC-1 が凝集し赤色の蛍光を発し、膜電位が低下すると、JC-1 が単量体として存在し緑色の蛍光を発します。この赤色と緑色の蛍光強度の変化をミトコンドリアの状態として評価することができます。



初めてでも使いやすい

従来の課題を解決
難溶性のJC-1 色素を容易に溶解することができます。
様々な装置に対応
検出装置毎に実験例を準備しています。
解析時のバッファーを同梱
細胞の状態をより長く維持するため、HEPES 含有のバッファーを同梱しています。



脱分極による評価例


■実験条件
JC-1 濃度 : 2 μmol/l in MEM, 染色時間 :30 min
FCCP 濃度 :100 μmol/l, FCCP 処理時間 :1 h

■検出条件
Green:Ex 488 nm / Em 500-550 nm
Red :Ex 561 nm / Em 560-610 nm
スケールバー:20 μm
HeLa 細胞を脱分極剤であるcarbonylcyanide-p-trifluoromethoxyphenylhydrazone(FCCP)にて処理し、本キットで膜電位の変化を評価しました。 結果、未処理の細胞では、ミトコンドリア全体が赤く染まり、FCCP で処理した細胞は赤色蛍光の減少が確認されました。



操作の流れ
染色試薬を培養細胞へ添加するだけの簡単な操作で染色できます。また細胞の状態をより長く維持しながら解析できるHEPES 含有バッファーを本製品に同梱しています。


使用回数の目安
蛍光顕微鏡
フローサイトメーター
プレートリーダー
25 枚
(35mm dish 使用時)
100 回
5 枚
(96-well 使用時)
※ 2 μmol/l JC-1 working solution を調製した場合



アポトーシス誘導時の評価例
下記、評価例の操作方法は、本品の取扱説明書にてご覧いただけます。

蛍光顕微鏡
アポトーシス誘導により変化した膜電位を色の変化で明瞭にイメージング

■検出条件
Green:Ex 488 nm / Em 500-550 nm
Red :Ex 561 nm / Em 560-610 nm
スケールバー:80 μm

フローサイトメーター
個々の細胞の膜電位変化を定量解析 (汎用のフィルターに対応)

■検出条件
Green: Ex 488 nm / Em 515-545 nm
Red :Ex 488 nm / Em 564-604 nm

プレートリーダー
ウェル中のすべての細胞を対象に膜電位の変化を確認 (多検体処理に対応)

■検出条件
Green: Ex 485 nm / Em 525-545 nm
Red :Ex 535 nm / Em 585-605 nm



マイトファジー誘導とミトコンドリア膜電位変化の検出

Parkin発現HeLa細胞を用いて、CCCP(carbonyl cyanide m-chlorophenyl hydrazone)添加の有無によるミトコンドリアの状態を、マイトファジー検出キット(Mitophagy Detection Kit:MD01)及びミトコンドリア膜電位検出キット(JC-1 MitoMP Detection Kit: MT09)にて評価しました。
 
結果、CCCP未処理の細胞ではマイトファジーは殆ど検出されず、またミトコンドリア膜電位が正常に維持されていることが確認されました。一方、CCCPを添加した細胞では、ミトコンドリア膜電位の低下(JC-1の赤色蛍光減少)とマイトファジーの誘導(Mtphagy Dyeの蛍光増大)を確認しました。

スケールバー:20 μm
<検出条件>
■マイトファジー検出
Ex: 561 nm, Em: 570-700 nm
■ミトコンドリア膜電位検出
Green Ex: 488 nm, Em: 500-550 nm
Red Ex: 561 nm, Em: 560-610 nm

<実験条件>
■HeLa細胞へのParkin プラスミドの導入
HilyMax(製品コード:H357)を用いてHeLa細胞へParkin プラスミドを導入(Parkin プラスミド/HilyMax reagent : 0.1 μg/0.2 μL)
し,一晩培養後の細胞を用いて下記検出を行った。
 
■マイトファジー検出
Parkin発現HeLa細胞に0.1 μmol/L Mtphagy working solution を添加し37 ℃で30分間インキュベートした。その後、細胞をHBSSにて洗浄し、10 μg/mL CCCP/MEM 溶液を添加し、37 ℃にて2時間インキュベートした。処理した細胞を、蛍光顕微鏡にて観察した。
 
■ミトコンドリア膜電位検出
Parkin発現HeLa細胞に10 μg/mL CCCP/MEM 溶液を添加し、37℃にて1.5時間インキュベートした。そこへ終濃度2 μmol/Lとなるように4 μmol/L JC-1 working solutionを添加し、37 ℃で30分間インキュベートした。インキュベート後、HBSSを用いて細胞を洗浄しImaging Buffer solutionを添加後、蛍光顕微鏡にて観察した。


よくあるご質問 
染色後の細胞固定化、または細胞固定化後の染色は可能ですか?
 
取扱注意
1.安衛法, 2.保存方法:冷蔵
 
備 考
 
 
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